神经母细胞瘤(neuroblastoma, NB)是儿童最常见的颅外恶性实体肿瘤,可发生于新生儿期,发病率约1/10 000,占儿童恶性肿瘤的7% ~10%,男性略多于女性。国际神经母细胞瘤分期系统(International Neuroblastoma Staging System, INSS)将NB分为Ⅰ~Ⅳ期和Ⅳs期,其中Ⅳs(或4S)期是NB的一个特殊分期,以高转移率和高自愈率为主要特点,约占NB总数的5%[1]。4S期NB是指发病年龄小于12月龄,原发肿瘤为INSS Ⅰ期或Ⅱ期,伴有肝、皮肤和(或)微量骨髓转移(骨髓涂片或活检提示肿瘤细胞占有核细胞比例不超过10%)[2]的NB。尽管4S期NB患儿存在转移,但绝大多数预后良好,肿瘤可自然消退,其5年总体生存率(overall survival, OS)为84% ~92%,5年无事件生存率(event-free survival, EFS)约82%[1-3]。这种自发消退的情况并非4S期NB所特有,一些存在骨转移以及低分期的NB患儿也有自发消退的现象[4]。此外,4S期NB有时也会进展为4期或其他高危疾病,甚至在进展之后仍然获得消退[5]。国际神经母细胞瘤风险组(International Neuroblastoma Risk Group, INRG)以5年EFS为标准,对35个潜在预后因素进行统计,发现INSS分期、发病年龄、组织学特征、肿瘤分化程度、MYCN状态、染色体11q和DNA倍性等是影响NB预后的主要因素[2, 5-7]。本文将阐述近年来4S期NB预后不良相关因素的研究进展。
一、病理分型国际神经母细胞瘤病理分类(International Neuroblastoma Pathology Classification, INPC)采用Shimada原始分类系统,将NB分为预后良好型(favorable histology, FH)和预后不良型(unfavorable histology, UH)。两种类型NB患儿3年EFS分别约85%、41%[8]。尽管UH型在4S期NB中占比不足10%,但其仍然是不可忽视的NB预后不良相关因素之一。Asuka、Bruno等[9-11]针对4S期NB的研究发现,在排除其他混杂因素后,UH型NB的OS和EFS低于FH型。UH型中Schwannian基质减少或缺失,可导致NGF/NTRK1、NRG1/ERBB2或NRG1/ERBB3等信号通路失活,抑制抗增殖和诱导分化因子的分泌,进而阻抑肿瘤细胞的分化和成熟,这可能是UH型NB预后较差的原因之一[12]。
二、遗传因素 (一) MYCN基因扩增MYCN基因是MYC家族的一员,后者是一类促癌基因,包括c-MYC、MYCN和MYCL三组同源基因。人体MYCN基因位于2号染色体短臂(2P24.3),表达蛋白MYCN长度为60~63 KDa,半衰期约30 min,参与胚胎发育过程的基本调控。MYCN与细胞增殖、细胞凋亡和肿瘤发生密切相关。研究发现,MYCN通过多种途径促进肿瘤的发生发展[13]:①MYCN可通过下调整合素α1和β1促进细胞外基质分离,并能够促进黏附斑激酶(focal adhesion kinase, FAK)的转录,后者是整合素信号转导的关键调节因子,从而协助肿瘤细胞顺利迁移;②MYCN可以阻断单核细胞趋化蛋白-1/CC趋化因子配体2(MCP-1/CCL2)的表达,进而抑制NKT细胞的趋化作用,干扰免疫监视;③MYCN还可以通过PI3K/mTOR途径促进血管生成素分泌,抑制内皮生长抑制剂的释放,进而促进血管形成。在细胞周期方面,MYCN扩增的NB细胞未能在G1期停滞,这可能与MYCN上调细胞周期蛋白D2、CDK4和SKP2,或下调肿瘤蛋白53诱导型核蛋白1 (TP53INP1) 有关。抑制MYCN可以显著降低细胞G1期向S期转变的效率,导致S期细胞减少以及G1期细胞堆积[13-14]。除此以外,MYCN扩增导致MYCN蛋白堆积,产生大量MYCN-MAX异二聚体,后者可能具有阻止细胞分化、促进细胞增殖、增加肿瘤恶性程度的作用[8]。
20% ~30%的NB存在MYCN扩增[14-16]。4S期NB MYCN扩增的比例相对不高,在一组由儿童癌症研究组(Children's Cancer Group Study)、法国小儿肿瘤协会(French Society of Pediatric Oncology)以及INRG纳入研究的4S期NB患儿中,发生MYCN扩增的比例低于8%[2, 17]。MYCN基因扩增是4S期NB预后不良的明确相关因素之一[9, 18]。一项涵盖1971—2020年间37项研究的系统性评价文章显示,伴有MYCN扩增的4S期NB患儿死亡率接近56%,印证了MYCN扩增的高危险度[3]。近年来,MYCN基因扩增的异质性也逐渐引起了人们的注意,需要进一步探索MYCN基因与作用靶点及其他蛋白质之间的复杂关系,以寻求针对其异质性的个体化治疗[14-15]。
(二) DNA指数/染色体倍性肿瘤细胞的DNA含量也与NB预后之间存在关联。在定量细胞学上,细胞核的DNA含量并不是直接测量出来的,也不是一个绝对的数量。细胞DNA图像自动扫描分析技术(DNA Image Cytometry, DNA-ICM)通过测定染色细胞核的积分光密度(integrated optical density, IOD)判断细胞核含量。由于DNA含量是由二维结构测定的,不能完全反映染色质的倍数,为了避免由此造成的误差,在测量肿瘤细胞的DNA含量时,通常使用DNA指数(DNA index, DI)进行评估。DI是被测细胞G0/G1期IOD与正常细胞(通常为淋巴细胞)G0/G1期IOD比值的均值,正常二倍体细胞的DI等于1,DI>1或DI<1都称为异倍体,DI>1的细胞也称作超二倍体细胞。研究发现18月龄以下的NB患儿中,DI>1者肿瘤分期较低,且预后较好[19]。这可能是由于有丝分裂缺陷导致全染色体扩增引起,而非节段性染色体畸变所致。但在发病年龄较大的患儿中,高DI往往由节段性染色体畸变引起,与预后的关联不如前者密切。早期研究发现,二倍体NB较超二倍体发生MYCN扩增的比例更高,且常常在确诊时伴随更高的乳酸脱氢酶水平和更低的化疗敏感度。即便是在预后相对较好的4S期NB患儿中,二倍体组的预后情况也比非二倍体组更差[20]。上述结论在Katzenstein等[7]的研究中也得到证实,Katzenstein通过回顾性分析110例4S期NB患儿的预后情况发现,二倍体较超二倍体4S期NB患儿预后差(3年OS分别为68%、90%)。
(三) 染色体畸变染色体畸变是指染色体在数量和结构上的异常改变,包括染色体数目改变和染色体结构异常。NB患儿常见的染色体畸变包括11q和1p36缺失、17q获得[19]。
11q缺失:以往研究发现,20% ~45%的NB存在11q杂合性缺失(loss of heterozygosity, LOH),11q23是缺失最频繁的区域。11q异常的比例与分期相关(1期8%,2期10%,3期21%,4期52%,4S期11%)[21]。Spitz等[22]的早期研究回顾性分析85例4S期NB患儿预后情况,发现伴有11q缺失的4S期NB患儿预后较差,生存率更低。近期研究显示,11q缺失还会大幅增加4S期NB的复发风险[23]。Coronado等[24]通过比较不同分期NB的免疫情况,发现11q缺失的NB表现出多种免疫抑制特征,包括静息期CD4+T细胞、M2巨噬细胞的增加以及白介素10、转化生长因子β1高表达等,这提示11q缺失可能具有促进肿瘤免疫逃逸的作用。此外,微卫星标记技术对11q等位基因进行分析后发现,约17%的NB存在不平衡11qLOH(unbalanced 11qLOH, unb11qLOH),即在11q LOH的基础上检测到一定的11p物质,约占11qLOH的50%;miRNA表达谱也发现,11q缺失NB实际上由两种临床亚型组成,且EFS和OS的差异有统计学意义;相比于单纯11qLOH,unb11qLOH的3年EFS下降更低(约74% vs. 50%),可能与NB的不良预后更为相关[25-26]。
1p36缺失:1p36缺失是肿瘤常见的染色体异常,25% ~35%的NB存在1p36缺失[16, 27]。1p36LOH的NB患儿的3年EFS和OS分别为47%、64%,而没有1p36LOH的患儿分别为77%、85%[26]。在Denah等[28]的回顾性研究中,伴有1p染色体异常的4S期NB,5年EFS和OS均不到50%,远比1p正常的4S期NB预后差(5年EFS和OS均接近90%)。CHD5、CAMTA1、KIF1B、CASZ1和miR-34a可能是1p36相关的抑癌基因,其中CHD5 (1p36.31)是主要的候选抑癌基因,其活化与转录抑制存在相关性[27]。Henrich等[29]认为,1p36缺失是由于多种基因剂量不足,导致敏感性肿瘤抑制因子共缺失造成,而非传统的“二次打击”所引起。1p36.3缺失的NB患儿均具有不利预后的组织学特征,并与MYCN扩增高度相关[16]。70%的MYCN扩增NB存在1p36缺失,Spieker的缺失作图研究揭示了MYCN单拷贝NB中1p36.2→36.3的较短缺失,以及MYCN扩增NB从1p35延伸到至少1p36.1的较大缺失。这个发现预测了两个可能的肿瘤抑制区域:与非MYCN扩增NB相关的远端肿瘤抑制区域,以及与MYCN扩增相关的近端抑制区域。而CHD5可能是1p36重要的远端抑癌基因[30]。
17q获得:Denah等[28]的研究显示染色体17q异常也与4S期NB的不良预后存在相关性。染色体17q获得发生于50% ~70%的NB中[13, 27]。17q获得是最常见的染色体畸变,这种变异被普遍认为与NB的发生有关[16]。17q21→25是变异最频繁的区域,BIRC5、SECTM1和TBCD是几个可能的候选基因,约27%的NB患儿可检测到BIRC5扩增,BIRC5高表达能够抑制细胞凋亡,已证实与不良预后和低生存率有关,而抑制BIRC5可以促进凋亡发生并抑制肿瘤生长,是NB的潜在治疗靶点[27]。也有研究显示,11q缺失的NB亚群中,预后良好与预后不良组发生17q获得的比例相当,即17q获得并未造成明显的EFS和OS差异[25]。17q获得的NB较17q正常的NB具有更接近细胞核中心的17号染色体,而细胞核中心的转录速度高于周围,因此前者17q表达水平往往更高。另外,经过MYCN转染后,SHEP和GIMEN两个细胞系较转染前都出现了17号染色体不平衡获得,且后者的17q更靠近细胞核中心,这意味着MYCN过表达可能会促进NB发生17q获得[31]。除此以外,染色体17q的获得还常伴随1p缺失、发病年龄晚等其他预后因素,这些结果表明17q获得可能并非独立的预后因素[25]。
三、临床特征 (一) 发病年龄发病年龄是INRG重要的预后因素。一般而言,发病年龄早的NB患儿预后较好[2]。Denah等[28]在其回顾性研究中定义了区别于传统4S期的“4S期模式NB”(或具有4S期特征的NB),即原发肿瘤为INSS Ⅰ期或Ⅱ期,有肝、皮肤和(或)骨髓转移;该定义在原4S期NB的基础上取消了发病年龄及骨髓侵犯程度的限制;12月龄以下及12~18月龄的4S期模式NB,5年EFS分别为79%和55%。Tomoko等[17]的研究也采用了与Denah类似的定义,其研究发现12月龄以下、12~18月龄以及18月龄以上的4S期模式NB,5年EFS分别为89.4%、100%和53.1%,该结果提示12月龄以下、18月龄以上的患儿较12~18月龄患儿可能预后较差;4S期模式NB在不同年龄段的发病率随发病年龄的增加而逐渐降低,这可能是NB早期筛查得以普及的结果,但也可能与4S期NB自发消退、或进一步恶化成4期NB有关。事实上,INRG于2008年提出的国际神经母细胞瘤危险度分级系统(International Neuroblastoma Risk Group Staging System, INRGSS)已将低危组的发病年龄上限调整至18月龄。此外,Parodi等[32]在分析进展性4S期NB时发现,4S期向4期进展的风险与发病年龄增加存在相关性。
(二) 转移部位1. 骨髓转移:4S期NB的转移可能与神经嵴干细胞(neural crest stem cells,NCSCs)的发育性迁徙有关。在胚胎发育过程中,NCSCs可通过背外侧途径迁移到皮肤,也会通过腹膜途径迁移到主动脉- 性腺- 中肾上皮细胞,随后NCSCs进入血液,通过肝脏进入骨髓;这恰好与4S期NB的转移部位一致。60% ~65%的4S期NB患儿确诊时已出现骨髓转移,复发的4S期NB患儿中也有15% ~20%伴有骨髓受累[33-34]。4S期NB骨髓浸润程度(tumor cell infiltration, TCI)的研究显示,4S期NB患儿的TCI程度与OS呈负相关,且TCI程度与MYCN扩增无明显相关,这提示4S期NB的TCI程度可能与预后不良相关,并且可能是独立的预后因素[35]。
2. 肝脏转移:4期NB鲜有肝脏转移的报道,但4S期NB肝脏转移十分常见。一项有关4S期NB肝转移的研究显示,约85.8%的4S期NB患儿存在肝脏受累,表现为肝脏散在数十至数百个独立结节,结节的生长和消退可同时进行,从发生到消退可历经数月[33]。肝脏受累的4S期NB虽能自发消退,但持续性肝肿大容易引发严重呼吸衰竭、循环衰竭和肾功能不全而致患儿死亡[36]。一项纳入31例4S期NB患儿的回顾性队列研究显示,6例在确诊后1周里,由于早期肝转移器官受压迫而发生严重呼吸衰竭,其中4例年龄小于4周,且一半接受了化疗,但均在确诊后3周里陆续死于多器官衰竭[5]。因此,严重肝转移也是4S期NB不良预后的相关预后因素。
3. 原发部位:肾上腺是NB最常见的原发部位(40%),其次是腹腔(25%)、盆腔(15%)、纵隔(15%)和颈部(5%)的交感神经节,原发部位和预后有一定相关性。INRG的最新报告显示:侵及肾上腺的NB,往往伴随较低的OS和EFS,且独立于其他预后相关因素[10]。相比之下,原发于纵膈的NB其OS和EFS更高。此外,SEER(surveillance, epidemiology and end results)数据库的一项研究显示,双侧和单侧肾上腺受累的NB患儿其OS大致相同,但前者发生远处转移的概率高于后者[37]。Stefano等[38]在研究4S期NB原发肿瘤切除手术的价值时,发现非肾上腺起源的4S期NB其5年OS优于肾上腺起源的4S期NB,验证了肾上腺来源的4S期NB与不良预后之间存在相关性。
四、总结4S期NB的不良预后与MYCN基因拷贝数、DNA指数/染色体倍性、染色体畸变等具有相关性,但其与发病年龄的相关性尚存在争议,主要是4S期NB的年龄分层一直存在分歧;另外,UH病理类型、原发部位、骨髓和肝转移程度亦与不良预后具有一定相关性。总之,4S期NB不同预后相关因素的价值与相关性,是今后进一步研究的方向,需要深入探索、分析,并用于指导临床诊断和治疗。
利益冲突 作者声明不存在利益冲突
作者贡献声明 文献检索为王鹏程,论文调查设计为董瑞,数据收集与分析为王鹏程,论文结果撰写为王鹏程,论文讨论分析为董瑞
[1] |
Wang Z, Sun H, Li K, et al. Prognostic factor analysis of stage 4S neuroblastoma in infant patients: A single center study[J]. J Pediatr Surg, 2019, 54(12): 2585-2588. DOI:10.1016/j.jpedsurg.2019.08.031 |
[2] |
Cohn SL, Pearson AD, London WB, et al. The International Neuroblastoma Risk Group (INRG) classification system: an INRG Task Force report[J]. J Clin Oncol, 2009, 27(2): 289-297. DOI:10.1200/jco.2008.16.6785 |
[3] |
Raitio A, Rice MJ, Mullassery D, et al. Stage 4S neuroblastoma: what are the outcomes?a systematic review of published studies[J]. Eur J Pediatr Surg, 2021, 31(5): 385-389. DOI:10.1055/s-0040-1716836 |
[4] |
Matthay KK. Stage 4S neuroblastoma: what makes it special?[J]. J Clin Oncol, 1998, 16(6): 2003-2006. DOI:10.1200/jco.1998.16.6.2003 |
[5] |
Tas ML, Nagtegaal M, Kraal K, et al. Neuroblastoma stage 4S: Tumor regression rate and risk factors of progressive disease[J]. Pediatr Blood Cancer, 2020, 67(4): e28061. DOI:10.1002/pbc.28061 |
[6] |
蔡元霞, 武志祥, 王奕, 等. CDC5L表达对神经母细胞瘤临床及预后评估的意义[J]. 临床小儿外科杂志, 2019, 18(6): 472-479. Cai YX, Wu ZX, Wang Y, et al. Expression of CDC5L in neuroblastoma and its clinical and prognostic significance[J]. J Clin Ped Sur, 2019, 18(6): 472-479. DOI:10.3969/j.issn.1671-6353.2019.06.008 |
[7] |
Katzenstein HM, Bowman LC, Brodeur GM, et al. Prognostic significance of age, MYCN oncogene amplification, tumor cell ploidy, and histology in 110 infants with stage D (S) neuroblastoma: the pediatric oncology group experience-a pediatric oncology group study[J]. J Clin Oncol, 1998, 16(6): 2007-2017. DOI:10.1200/jco.1998.16.6.2007 |
[8] |
Nakazawa A. Biological categories of neuroblastoma based on the international neuroblastoma pathology classification for treatment stratification[J]. Pathol Int, 2021, 71(4): 232-244. DOI:10.1111/pin.13085 |
[9] |
Hachitanda Y, Hata J. Stage IVS neuroblastoma: a clinical, histological, and biological analysis of 45 cases[J]. Hum Pathol, 1996, 27(11): 1135-1138. DOI:10.1016/s0046-8177(96)90304-4 |
[10] |
De Bernardi B, Di Cataldo A, Garaventa A, et al. Stage 4s neuroblastoma: features, management and outcome of 268 cases from the Italian Neuroblastoma Registry[J]. Ital J Pediatr, 2019, 45(1): 8. DOI:10.1186/s13052-018-0599-1 |
[11] |
Kawano A, Hazard FK, Chiu B, et al. Stage 4S Neuroblastoma: Molecular, Histologic, and Immunohistochemical Characteristics and Presence of 2 Distinct Patterns of MYCN Protein Overexpression-A Report From the Children's Oncology Group[J]. Am J Surg Pathol, 2021, 45(8): 1075-1081. DOI:10.1097/pas.0000000000001647 |
[12] |
Pajtler KW, Mahlow E, Odersky A, et al. Neuroblastoma in dialog with its stroma: NTRK1 is a regulator of cellular cross-talk with Schwann cells[J]. Oncotarget, 2014, 5(22): 11180-11192. DOI:10.18632/oncotarget.2611 |
[13] |
Huang M, Weiss WA. Neuroblastoma and MYCN[J]. Cold Spring Harb Perspect Med, 2013, 3(10): a014415. DOI:10.1101/cshperspect.a014415 |
[14] |
Ruiz-Pérez MV, Henley AB, Arsenian-Henriksson M. The MYCN Protein in Health and Disease[J]. Genes (Basel), 2017, 8(4): 113. DOI:10.3390/genes8040113 |
[15] |
Berbegall AP, Bogen D, Pötschger U, et al. Heterogeneous MYCN amplification in neuroblastoma: a SIOP Europe Neuroblastoma Study[J]. Br J Cancer, 2018, 118(11): 1502-1512. DOI:10.1038/s41416-018-0098-6 |
[16] |
Yong MH, Hwang WS, Knight LA, et al. Comparing histopathological classification with MYCN, 1p36 and 17q status detected by fluorescence in situ hybridization from 14 untreated primary neuroblastomas in Singapore[J]. Singapore Med J, 2009, 50(11): 1090-1094. |
[17] |
Iehara T, Hiyama E, Tajiri T, et al. Is the prognosis of stage 4s neuroblastoma in patients 12 months of age and older really excellent?[J]. Eur J Cancer, 2012, 48(11): 1707-1712. DOI:10.1016/j.ejca.2012.01.010 |
[18] |
Twist CJ, Naranjo A, Schmidt ML, et al. Defining Risk Factors for Chemotherapeutic Intervention in Infants With Stage 4S Neuroblastoma: A Report From Children's Oncology Group Study ANBL0531[J]. J Clin Oncol, 2019, 37(2): 115-124. DOI:10.1200/jco.18.00419 |
[19] |
Swift CC, Eklund MJ, Kraveka JM, et al. Updates in Diagnosis, Management, and Treatment of Neuroblastoma[J]. Radiographics, 2018, 38(2): 566-580. DOI:10.1148/rg.2018170132 |
[20] |
Bowman LC, Castleberry RP, Cantor A, et al. Genetic staging of unresectable or metastatic neuroblastoma in infants: a Pediatric Oncology Group study[J]. J Natl Cancer Inst, 1997, 89(5): 373-380. DOI:10.1093/jnci/89.5.373 |
[21] |
Mlakar V, Jurkovic Mlakar S, Lopez G, et al. 11q deletion in neuroblastoma: a review of biological and clinical implications[J]. Mol Cancer, 2017, 16(1): 114. DOI:10.1186/s12943-017-0686-8 |
[22] |
Spitz R, Hero B, Ernestus K, et al. Deletions in chromosome arms 3p and 11q are new prognostic markers in localized and 4s neuroblastoma[J]. Clin Cancer Res, 2003, 9(1): 52-58. |
[23] |
Juan Ribelles A, Barberá S, Yáñez Y, et al. Clinical features of neuroblastoma with 11q deletion: an increase in relapse probabilities in localized and 4S stages[J]. Sci Rep, 2019, 9(1): 13806. DOI:10.1038/s41598-019-50327-5 |
[24] |
Coronado E, Yañez Y, Vidal E, et al. Intratumoral immunosuppression profiles in 11q-deleted neuroblastomas provide new potential therapeutic targets[J]. Mol Oncol, 2021, 15(2): 364-380. DOI:10.1002/1878-0261.12868 |
[25] |
Buckley PG, Alcock L, Bryan K, et al. Chromosomal and microRNA expression patterns reveal biologically distinct subgroups of 11q-neuroblastoma[J]. Clin Cancer Res, 2010, 16(11): 2971-2978. DOI:10.1158/1078-0432.Ccr-09-3215 |
[26] |
Komotar RJ, Otten ML, Starke RM, et al. Chromosome 1p and 11q deletions and outcome in neuroblastoma-a critical review[J]. Clin Med Oncol, 2008, 2: 419-420. DOI:10.4137/cmo.s391 |
[27] |
Costa RA, Seuánez HN. Investigation of major genetic alterations in neuroblastoma[J]. Mol Biol Rep, 2018, 45(3): 287-295. DOI:10.1007/s11033-018-4161-4 |
[28] |
Taggart DR, London WB, Schmidt ML, et al. Prognostic value of the stage 4S metastatic pattern and tumor biology in patients with metastatic neuroblastoma diagnosed between birth and 18 months of age[J]. J Clin Oncol, 2011, 29(33): 4358-4364. DOI:10.1200/jco.2011.35.9570 |
[29] |
Henrich KO, Schwab M, Westermann F. 1p36 tumor suppression-a matter of dosage?[J]. Cancer Res, 2012, 72(23): 6079-6088. DOI:10.1158/0008-5472.Can-12-2230 |
[30] |
García-López J, Wallace K, Otero JH, et al. Large 1p36 deletions affecting Arid1a locus facilitate mycn-driven oncogenesis in neuroblastoma[J]. Cell Rep, 2020, 30(2): 454-464.e5. DOI:10.1016/j.celrep.2019.12.048 |
[31] |
Kuzyk A, Booth S, Righolt C, et al. MYCN overexpression is associated with unbalanced copy number gain, altered nuclear location, and overexpression of chromosome arm 17q genes in neuroblastoma tumors and cell lines[J]. Genes Chromosomes Cancer, 2015, 54(10): 616-628. DOI:10.1002/gcc.22273 |
[32] |
Parodi S, Sorrentino S, Cataldo AD, et al. Metastatic progression in infants diagnosed with stage 4S neuroblastoma.A study of the Italian Neuroblastoma Registry[J]. Pediatr Blood Cancer, 2021, 68(5): e28904. DOI:10.1002/pbc.28904 |
[33] |
van Noesel MM. Neuroblastoma stage 4S: a multifocal stem-cell disease of the developing neural crest[J]. Lancet Oncol, 2012, 13(3): 229-230. DOI:10.1016/s1470-2045(12)70012-8 |
[34] |
Schumacher-Kuckelkorn R, Volland R, Gradehandt A, et al. Lack of immunocytological GD2 expression on neuroblastoma cells in bone marrow at diagnosis, during treatment, and at recurrence[J]. Pediatr Blood Cancer, 2017, 64(1): 46-56. DOI:10.1002/pbc.26184 |
[35] |
Sorrentino S, Rosanda C, Parodi S, et al. Cyto-morphologic evaluation of bone marrow in infants with disseminated neuroblastoma[J]. J Pediatr Hematol Oncol, 2012, 34(2): 154-158. DOI:10.1097/MPH.0b013e31821d80be |
[36] |
French AE, Irwin MS, Navarro OM, et al. Long-term hepatic outcomes in survivors of stage 4S and 4 neuroblastoma in infancy[J]. Pediatr Blood Cancer, 2012, 58(2): 283-288. DOI:10.1002/pbc.23077 |
[37] |
Ahmed AA, Zhang L, Reddivalla N, et al. Neuroblastoma in children: Update on clinicopathologic and genetic prognostic factors[J]. Pediatr Hematol Oncol, 2017, 34(3): 165-185. DOI:10.1080/08880018.2017.1330375 |
[38] |
Avanzini S, Buffoni I, Gigliotti AR, et al. Resection of primary tumor in stage 4S neuroblastoma: a second study by the Italian Neuroblastoma Group[J]. Pediatr Surg Int, 2021, 37(1): 37-47. DOI:10.1007/s00383-020-04766-1 |